🗒️鸽子的实验笔记-高分辨快速荧光成像系统
2025-11-24
| 2025-11-24
0  |  0 分钟
type
status
date
slug
summary
tags
category
icon
password

开机与系统初始化

  1. 开启电源:严格按照顺序开启设备电源:总电源 → 显微镜控制箱 → 荧光光源开关(如第3、4号开关) → 计算机
  1. 软件启动与初始化:启动成像软件。若为当日首次开机,系统可能会自动进行初始化(约30秒),期间请勿放入样品或进行其他操作
  1. 放置样品
    1. 将样品正确放置于载物台。
    2. 对于载玻片,务必使盖玻片朝下(即朝向物镜)放置。
    3. 将样本移动到显微镜视野的中央位置。

图像采集参数设置

  1. 选择观察方式与物镜
    1. 软件或显微镜上选择观察模式:BF(明场)或FLUO(荧光,通常为默认)
    2. 选择物镜倍数。特别注意:若有两个20倍物镜,用于拍摄载玻片时需选择第二个20倍物镜
    3. 切换光路路径,选择通过目镜直接观察或通过软件在电脑屏幕上观察。
  1. 设置基本成像参数
    1. 曝光时间:一般建议控制在20ms以内,以避免信号过曝和荧光淬灭
    2. Image Size (像素合并):可设置为2x2以平衡信噪比和分辨率。
    3. 视场大小:通常调至最大。
  1. 配置荧光通道
    1. 系统通常预设通道,如390nm(DAPI)、475nm(GFP/FITC)、560nm(TRITC/ Cy3)、630nm(Cy5)等。
    2. 点击"+"号添加所需通道,并为每个通道设置对应的荧光颜色和激发/发射参数注意区分滤光片本身的参数与软件中通道的设置参数。
  1. 预览与对焦
    1. 点击"动态"预览实时视野。
    2. 调节动态对比度(Contrast),确保其最大值(Max)不低于3000,以获得良好的信噪比。
    3. 使用粗调细调旋钮或软件的自动对焦功能(AF)使图像清晰。对于多通道成像,可启用RFC(实时对焦补偿)模式或在浏览器模式下选择"Live + Single Capture"来确保各通道焦平面一致。
 

高级成像模式应用

  1. 选择成像模式
    1. Thunder模式:成像速度最快,能有效去除背景噪音,适用于快速活细胞成像。
    2. 其他模式(如共聚焦模式):需根据样本类型(如组织厚度、荧光强度)选择。
  1. 大图拼接
    1. 拔出显微镜右侧的杆子,进入浏览器模式
    2. 选择拼接模式(如Spiral),并设置拼接区域(可选择多边形、矩形、圆形等形状)。
    3. 进行多点对焦:在选定区域内手动(F)或自动(AF)定焦多个点,建议采用"平均单点"策略,并对需要清晰成像的层面进行Z轴定焦
    4. 完成设置后,点击"Merge"进行图像拼接
  1. Z-Stack(Z轴层扫)
    1. 用于拍摄类器官、细胞球等具有三维结构的样本。
    2. 点击"Begin"设定Z轴起点,调节Z轴后点击"End"设定终点,最后点击"Start"开始自动扫描,系统将在Z轴方向上采集一系列图像。
  1. 明场彩色成像(如用于组化片子)
    1. 将右侧相机从单色(如K5)切换为彩色相机(如K5C)
    2. 上方光源选择TL-BF(透射光明场)
    3. 关闭自动对比度功能。
    4. Image Size可选择5MP,Live imaging可选2.2MP。
    5. 曝光时间仍建议在20ms以内,可调节Intensity(强度)Aperture(孔径) (通常调至最大)来控制亮度。
    6. 白平衡校准:在样品空白区域点击进行白平衡。若组织存在阴影,可使用Link Shading模式进行校准。
    7. 光路设置:将右侧杆子推入(用于荧光),左侧杆子拔出(用于明场)。

 拍摄、保存与关机

  1. 拍摄
    1. 拍摄顺序:先拍摄最亮的荧光通道,以减少荧光串色和淬灭的影响。
    2. 拍摄模式:"Single"模式只拍摄一张当前视野;"Start"模式开始按预设方案(如多点位、大图拼接、Z-stack)采集所有图像。
  1. 数据保存
    1. 图像数据一般保存到E盘,请建立个人文件夹并规范命名保存。
    2. 重要:仪器通常只临时保存数据(如3个月),请务必及时将数据备份至个人存储设备或服务器。可通过局域网上传数据
实验技巧
  • 学习
  • 科研
  • 实验
  • 😳鸽子的实验笔记-Cytoflex SRT 流式细胞分选仪的使用mlr3包—安装与最简易的示例
    目录